Характеристика CD56-позитивних клітин у легенях морської свинки в динаміці експериментального алергічного запалення

Автор(и)

  • С. С. Попко Запорізький державний медичний університет, Україна, Ukraine https://orcid.org/0000-0002-5533-4556
  • В. М. Євтушенко Запорізький державний медичний університет, Україна, Ukraine https://orcid.org/0000-0002-6858-6488
  • Г. А. Зідрашко Запорізький державний медичний університет, Україна, Ukraine

DOI:

https://doi.org/10.14739/2310-1210.2022.1.235880

Ключові слова:

CD56-позитивна клітина, легеня, морська свинка, алергічне запалення, імуногістохімічне забарвлення, нейроендокринна клітина

Анотація

Мета роботи – вивчення морфометричної характеристики та розподілу CD56-позитивних клітин у легенях морських свинок у динаміці експериментального овальбумін-індукованого алергічного запалення.

Матеріали та методи. Вивчили розподіл і кількісні зміни CD56-позитивних клітин у легенях морських свинок у динаміці експериментального алергічного запалення з використанням гістологічного, гістохімічного, імуногістохімічного, морфометричного та статистичного методів.

Результати. У динаміці експериментального овальбумін-індукованого алергічного запалення спостерігали збільшення кількості CD56-позитивних клітин. Середня кількість CD56-позитивних клітин збільшилась у ранньому періоді алергічного запалення (на 30 добу, ІІ експериментальна група) на 64,5 % (p*/** < 0,001) порівняно з контрольною групою, на 56,4 % (р* < 0,01) порівняно з 23 добою спостереження (І експериментальна група). Надалі збільшення середньої кількості CD56-позитивних клітин встановили в пізньому періоді алергічного запалення (на 36 добу) на 60,2 % (p*/** < 0,001) порівняно з 23 добою експерименту (І експериментальна група). Спостерігали зниження середньої кількості CD56-позитивних клітин на 44 добу експерименту на 51,5 % (p*/** < 0,001) порівняно з 36 добою спостереження в ІІІ експериментальній групі.

Висновки. CD56-позитивні клітини локалізуються в легеневому інтерстиції. Найбільш статистично значуще збільшення кількості CD56-позитивних клітин виявили у тварин ІІІ експериментальної групи в пізньому періоді алергічного запалення, що свідчить про активну участь CD56-позитивних клітин у підтримці процесу алергічного запалення в легенях морських свинок.

Біографії авторів

С. С. Попко, Запорізький державний медичний університет, Україна

канд. мед. наук, доцент каф. гістології, цитології та ембріології

В. М. Євтушенко, Запорізький державний медичний університет, Україна

д-р мед. наук, професор, зав. каф. гістології, цитології та ембріології

Г. А. Зідрашко, Запорізький державний медичний університет, Україна

канд. мед. наук, доцент каф. гістології, цитології та ембріології

Посилання

Van Acker, H. H., Capsomidis, A., Smits, E. L., & Van Tendeloo, V. F. (2017). CD56 in the Immune System: More Than a Marker for Cytotoxicity? Frontiers in Immunology, 8, Article 892. https://doi.org/10.3389/fimmu.2017.00892

Zhang, R., Ni, F., Fu, B., Wu, Y., Sun, R., Tian, Z., & Wei, H. (2016). A long noncoding RNA positively regulates CD56 in human natural killer cells. Oncotarget, 7(45), 72546-72558. https://doi.org/10.18632/oncotarget.12466

Mace, E. M., Gunesch, J. T., Dixon, A., & Orange, J. S. (2016). Human NK cell development requires CD56-mediated motility and formation of the developmental synapse. Nature Communications, 7, Article 12171. https://doi.org/10.1038/ncomms12171

Liao, C.-F., Chen, C.-C., Lu, Y.-W., Yao, C.-H., Lin, J.-H., Way, T.-D., Yang, T.-Y., & Chen, Y.-S. (2019). Effects of endogenous inflammation signals elicited by nerve growth factor, interferon-γ, and interleukin-4 on peripheral nerve regeneration. Journal of Biological Engineering, 13, Article 86. https://doi.org/10.1186/s13036-019-0216-x

Garg, A., Sui, P., Verheyden, J. M., Young, L. R., & Sun, X. (2019). Chapter Three - Consider the lung as a sensory organ: A tip from pulmonary neuroendocrine cells. In D. M. Wellik (Ed.), Current Topics in Developmental Biology (Vol. 132, pp. 67-89). Academic Press. https://doi.org/10.1016/bs.ctdb.2018.12.002

Kobayashi, Y., & Tata, P. R. (2018). Pulmonary Neuroendocrine Cells: Sensors and Sentinels of the Lung. Developmental Cell, 45(4), 425-426. https://doi.org/10.1016/j.devcel.2018.05.009

Klein Wolterink, R., Pirzgalska, R. M., & Veiga-Fernandes, H. (2018). Neuroendocrine Cells Take Your Breath Away. Immunity, 49(1), 9-11. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2018.06.010

Branchfield, K., Nantie, L., Verheyden, J. M., Sui, P., Wienhold, M. D., & Sun, X. (2016). Pulmonary neuroendocrine cells function as airway sensors to control lung immune response. Science, 351(6274), 707-710. https://doi.org/10.1126/science.aad7969

Veiga-Fernandes, H., & Artis, D. (2018). Neuronal-immune system cross-talk in homeostasis. Science, 359(6383), 1465-1466. https://doi.org/10.1126/science.aap9598

Akdis, C. A., Arkwright, P. D., Brüggen, M. C., Busse, W., Gadina, M., Guttman-Yassky, E., Kabashima, K., Mitamura, Y., Vian, L., Wu, J., & Palomares, O. (2020). Type 2 immunity in the skin and lungs. Allergy, 75(7), 1582-1605. https://doi.org/10.1111/all.14318

Popko, S. S., Yevtushenko, V. M., & Syrtsov, V. K. (2020). Influence of pulmonary neuroendocrine cells on lung homeostasis. Zaporozhye medical journal, 22(4), 568-575. https://doi.org/10.14739/2310-1210.2020.4.208411

Wallrapp, A., Riesenfeld, S. J., Burkett, P. R., Abdulnour, R. E., Nyman, J., Dionne, D., Hofree, M., Cuoco, M. S., Rodman, C., Farouq, D., Haas, B. J., Tickle, T. L., Trombetta, J. J., Baral, P., Klose, C., Mahlakõiv, T., Artis, D., Rozenblatt-Rosen, O., Chiu, I. M., Levy, B. D., … Kuchroo, V. K. (2017). The neuropeptide NMU amplifies ILC2-driven allergic lung inflammation. Nature, 549(7672), 351-356. https://doi.org/10.1038/nature24029

Löser, S., & Maizels, R. M. (2018). Immunology: The Neuronal Pathway to Mucosal Immunity. Current Biology, 28(1), R33-R36. https://doi.org/10.1016/j.cub.2017.11.025

Popko, S. S. (2021). Morphological rearrangement of the metabolic link of the microcirculatory bed of guinea pigs lungs after sensitization with ovalbumin. Current issues in pharmacy and medicine: science and practice, 14(1), 79-83. https://doi.org/10.14739/2409-2932.2021.1.226851

Dey, P. (2018). Basic and Advanced Laboratory Techniques in Histopathology and Cytology. Springer, Singapore. https://doi.org/10.1007/978-981-10-8252-8

Adner, M., Canning, B. J., Meurs, H., Ford, W., Ramos Ramírez, P., van den Berg, M., Birrell, M. A., Stoffels, E., Lundblad, L., Nilsson, G. P., Olsson, H. K., Belvisi, M. G., & Dahlén, S. E. (2020). Back to the future: re-establishing guinea pig in vivo asthma models. Clinical Science, 134(11), 1219-1242. https://doi.org/10.1042/CS20200394

Messaritakis, I., Stoltidis, D., Kotsakis, A., Dermitzaki, E. K., Koinis, F., Lagoudaki, E., Koutsopoulos, A., Politaki, E., Apostolaki, S., Souglakos, J., & Georgoulias, V. (2017). TTF-1- and/or CD56-positive Circulating Tumor Cells in patients with small cell lung cancer (SCLC). Scientific Reports, 7, Article 45351. https://doi.org/10.1038/srep45351

Yatabe, Y., Dacic, S., Borczuk, A. C., Warth, A., Russell, P. A., Lantuejoul, S., Beasley, M. B., Thunnissen, E., Pelosi, G., Rekhtman, N., Bubendorf, L., Mino-Kenudson, M., Yoshida, A., Geisinger, K. R., Noguchi, M., Chirieac, L. R., Bolting, J., Chung, J. H., Chou, T. Y., Chen, G., … Moreira, A. L. (2019). Best Practices Recommendations for Diagnostic Immunohistochemistry in Lung Cancer. Journal of Thoracic Oncology, 14(3), 377-407. https://doi.org/10.1016/j.jtho.2018.12.005

Ueda, K., Ueda, A., & Ozaki, K. (2019). A case of a malignant peripheral nerve sheath tumor in a guinea pig. Journal of Veterinary Medical Science, 81(12), 1859-1862. https://doi.org/10.1292/jvms.19-0464

Rooper, L. M., Bishop, J. A., & Westra, W. H. (2018). INSM1 is a Sensitive and Specific Marker of Neuroendocrine Differentiation in Head and Neck Tumors. The American Journal of Surgical Pathology, 42(5), 665-671. https://doi.org/10.1097/PAS.0000000000001037

Rooper, L. M., Sharma, R., Li, Q. K., Illei, P. B., & Westra, W. H. (2017). INSM1 Demonstrates Superior Performance to the Individual and Combined Use of Synaptophysin, Chromogranin and CD56 for Diagnosing Neuroendocrine Tumors of the Thoracic Cavity. The American Journal of Surgical Pathology, 41(11), 1561-1569. https://doi.org/10.1097/PAS.0000000000000916

Sakakibara, R., Kobayashi, M., Takahashi, N., Inamura, K., Ninomiya, H., Wakejima, R., Kitazono, S., Yanagitani, N., Horiike, A., Ichinose, J., Matsuura, Y., Nakao, M., Mun, M., Nishio, M., Okumura, S., Motoi, N., Ito, T., Miyazaki, Y., Inase, N., & Ishikawa, Y. (2020). Insulinoma-associated Protein 1 (INSM1) Is a Better Marker for the Diagnosis and Prognosis Estimation of Small Cell Lung Carcinoma Than Neuroendocrine Phenotype Markers Such as Chromogranin A, Synaptophysin, and CD56. The American Journal of Surgical Pathology, 44(6), 757-764. https://doi.org/10.1097/PAS.0000000000001444

Kriegsmann, K., Zgorzelski, C., Muley, T., Christopoulos, P., Thomas, M., Winter, H., Eichhorn, M., Eichhorn, F., von Winterfeld, M., Herpel, E., Goeppert, B., Stenzinger, A., Herth, F., Warth, A., & Kriegsmann, M. (2021). Role of Synaptophysin, Chromogranin and CD56 in adenocarcinoma and squamous cell carcinoma of the lung lacking morphological features of neuroendocrine differentiation: a retrospective large-scale study on 1170 tissue samples. BMC Cancer, 21(1), Article 486. https://doi.org/10.1186/s12885-021-08140-9

Anguille, S., Van Acker, H. H., Van den Bergh, J., Willemen, Y., Goossens, H., Van Tendeloo, V. F., Smits, E. L., Berneman, Z. N., & Lion, E. (2015). Interleukin-15 Dendritic Cells Harness NK Cell Cytotoxic Effector Function in a Contact- and IL-15-Dependent Manner. PLOS ONE, 10(5), Article e0123340. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0123340

Jiao, Y., Huntington, N. D., Belz, G. T., & Seillet, C. (2016). Type 1 Innate Lymphoid Cell Biology: Lessons Learnt from Natural Killer Cells. Frontiers in Immunology, 7, Article 426. https://doi.org/10.3389/fimmu.2016.00426

Gunesch, J. T., Dixon, A. L., Ebrahim, T. A., Berrien-Elliott, M. M., Tatineni, S., Kumar, T., Hegewisch-Solloa, E., Fehniger, T. A., & Mace, E. M. (2020). CD56 regulates human NK cell cytotoxicity through Pyk2. eLife, 9, Article e57346. https://doi.org/10.7554/eLife.57346

Chen, L., Youssef, Y., Robinson, C., Ernst, G. F., Carson, M. Y., Young, K. A., Scoville, S. D., Zhang, X., Harris, R., Sekhri, P., Mansour, A. G., Chan, W. K., Nalin, A. P., Mao, H. C., Hughes, T., Mace, E. M., Pan, Y., Rustagi, N., Chatterjee, S. S., Gunaratne, P. H., … Freud, A. G. (2018). CD56 Expression Marks Human Group 2 Innate Lymphoid Cell Divergence from a Shared NK Cell and Group 3 Innate Lymphoid Cell

##submission.downloads##

Опубліковано

2022-01-26

Номер

Розділ

Оригінальні дослідження